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光合作用-熒光測量系統(tǒng)GFS-3000

產品價格:
電議
產品型號:
GFS-3000
供應商等級:
企業(yè)未認證
經營模式:
工廠
企業(yè)名稱:
上海澤泉科技有限公司
所屬地區(qū):
上海市
發(fā)布時間:
2012/5/8 20:07:12

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徐勇先生(聯(lián)系我時,請說明是在維庫儀器儀表網看到的,謝謝)

企業(yè)檔案

上海澤泉科技有限公司

企業(yè)未認證營業(yè)執(zhí)照未上傳

經營模式:工廠

所在地:上海市

主營產品:CI-340手持式光合儀;CI-203手持式激光葉面積儀;CI-202葉面積儀;CI-110冠層分析儀;CI-600根系生長監(jiān)測儀

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GFS-3000——光合作用研究的設備
德國WALZ公司是的光合作用儀制造商之一,從1972年開始制造氣體交換測量系統(tǒng),先后生產過CMS-400、CQP-130、HCM-1000等光合儀,并在國際上得到廣泛應用。在總結30余年設計制造經驗的基礎上,結合新的技術進展,WALZ公司于2004年隆重推出了一款功能更加強大、設計更加人性化的便攜式光合-熒光測量系統(tǒng)——GFS-3000。
GFS-3000解決了近10年來光合領域在實際測量過程中(特別是野外測量時)遇到的許多技術問題,設計非常人性化。您在使用中會感覺到,在操作的任何一個過程中,GFS-3000都是站在用戶的角度切身為您考慮的。
GFS-3000的一個特點是允許多種模式同步測量氣體交換和葉綠素熒光,解決單一技術無法解釋的機理性問題。GFS-3000既可以在人工光下同步測量氣體交換和葉綠素熒光,又可以在完全不遮蔭的自然光下同步測量氣體交換和葉綠素熒光(技術!),甚至還可以同步測量氣體交換和葉綠素熒光成像(技術)!!!



1. 特點
1.1 H2O、CO2、溫度與光照的控制與測量

1)高4通道開路式非擴散紅外氣體分析器(CO2和H2O各2個通道)
2)出色的溫度控制范圍:從+50℃到低于環(huán)境溫度10℃(同類產品中控溫范圍)
3)出色的溫度控制模式:控制葉室跟蹤環(huán)境溫度;設置恒定葉室溫度(葉片溫度可變);設置恒定葉片溫度(葉室溫度可變)
4)干、濕雙重H2O控制系統(tǒng)(),完全滿足從西北干旱區(qū)到華南潮濕區(qū)的光合作用研究需要(0-75 000 ppm)
5)整合式CO2控制系統(tǒng)
6)CO2小鋼瓶氣密性,未用完可完全密閉待后續(xù)使用(同類產品的CO2小鋼瓶打開后1天內氣體就會漏完),大大節(jié)省耗材費用
7)出色的紅藍LED光源控制系統(tǒng)
8)外置濾器,方便更換(用戶不會再因為將儀器寄回廠家更換濾器而耽誤實驗了)
9)外置流量儀(同類產品都放在主機內部),方便檢查夾住葉片后葉室是否密封(如果葉室不密封,則所有測量的光合參數都是錯誤的!)



1.2 出色的葉室設計

1)多種葉室可選,樣品面積即使低至0.5 cm2也可得到滿意的結果
2)更換葉室時只需更換配件,大大節(jié)省了野外更換葉室所需時間(同類產品多為整體更換,花費大量時間)
3)支持用戶自定義葉室(可達1 L)
4)3個PAR探頭,分別跟蹤記錄環(huán)境PAR、葉室內葉片正面PAR和葉片背面PAR(葉室內葉片背面PAR探頭是次出現(xiàn),大大降低了只根據葉片正面PAR計算光合產量引起的誤差)
5)葉室雙路通風系統(tǒng),保證葉室上、下部氣體迅速混勻


1.3 三種模式同步測量氣體交換和葉綠素熒光

1)可與熒光附件連用,可與MINI-PAMIMAGING-PAM連用
2)在人工光(儀器提供的可控光)下同步測量氣體交換和葉綠素熒光
3)在自然光下(完全不遮蔭)同步測量氣體交換和葉綠素熒光(技術)4)同步測量氣體交換和全葉片熒光成像(技術)

1.4 方便的操作與數據處理
1)大屏幕觸摸式顯示器,帶背景光,可在所有環(huán)境下清楚顯示
2)簡單易學的編程功能,可在電腦上模擬操作
3)USB 2.0電腦接口,可與所有筆記本電腦連接(拋棄了RS 232接口,因為市面上95%以上的筆記本電腦不帶RS 232接口)

2. 測量參數
2.1 氣體交換參數
參比室和樣品室的CO2值(CO2abs,CO2sam),參比室和樣品室的H2O值(H2Oabs,H2Osam),流速(gas flow),環(huán)境氣壓(Pamb),葉室溫度(Tcuv),葉片溫度(Tleaf),環(huán)境溫度(Tamb),環(huán)境PAR(PARamb),葉室內葉片正面PAR(PARtop),葉室內葉片背面PAR(PARbot),葉室相對濕度(rh),蒸騰速率(E),水氣壓飽和虧(VPD),葉片氣孔導度(GH2O),凈光合速率(A),胞間CO2濃度(Ci),環(huán)境CO2濃度(Ca)等。
2.2 葉綠素熒光參數:與選擇的熒光附件或熒光儀的型號有關,見3.1-3.3節(jié)。
3. 同步測量氣體交換和熒光的三種模式

3.1 模式一:
與熒光附件3055-FL連用(類型:GFS-3000/FL),在人工光(儀器提供的可控光)下同步測量氣體交換和葉綠素熒光。
3.2 模式二:
與熒光附件3050-F連用(類型:GFS-3000/F),或與超便攜式調制熒光儀MINI-PAM連用(類型:GFS-3000/M),在自然光下(完全不遮蔭)同步測量氣體交換和葉綠素熒光。與調制熒光成像系統(tǒng)IMAGING-PAM(MINI-探頭)連用(類型:GFS-3000/IM),同步測量氣體交換和全葉片熒光成像
IMAGING-PAM可單獨使用,測量上述參數的全葉片熒光成像。
還可選配IMAGING-PAM的GFP成像探頭。

4. 基本配置比較


測量的熒光參數:Fo, Fm, Fm', F, Fo', Fv/Fm , ΔF/Fm'=Y(II), qP, qL, qN, NPQ, Y(NPQ), Y(NO), rETR等

熒光附件3050-F


MINI-PAM利用微光纖可與GFS-3000連用


連接微光纖后,仍可與紅藍光源連用在人工光下同步測量氣體交換與葉綠素熒光

測量的熒光參數
3050-F:Fo, Fm, Fm', F, Fv/Fm , ΔF/Fm'=Y(II), qP, qL, qN, NPQ, Y(NPQ), Y(NO), rETR等
MINI-PAM:Fo, Fm, Fm', F, Fv/Fm , ΔF/Fm', qP, qN, NPQ, rETR等

MINI-PAM可單獨使用,單獨使用時還可測量PAR、葉溫和快速光曲線(RLC)等。

3.3 模式三:

GFS-3000與IMAGING-PAM的MINI-探頭連用熒光成像
 
測量的熒光參數:Fo, Fm, Fm', F, Fv/Fm , ΔF/Fm'=Y(II), qP, qL, qN, NPQ, Y(NPQ), Y(NO), rETR, PAR Abs(葉片吸光系數)等的熒光成像。
配置GFS-3000/P單純的氣體交換測量系統(tǒng),不能測量熒光GFS-3000/FL可在人工光下同步測量氣體交換和熒光GFS-3000/F可在自然光下同步測量氣體交換和熒光GFS-3000/M
可在自然光下同步測量氣體交換和熒光,兩臺儀器可分開使用
GFS-3000/IM同步測量氣體交換和熒光成像,兩臺儀器可分開使用
氣體交換系統(tǒng)     
主機3000-C(包括CO2注入系統(tǒng))
鋰電池3025-A
鋰電池充電器LC-02
交流電適配器3020-N
葉室     
標準葉室3010-S
葉室配件
柱狀葉室
針葉/簇葉葉室
擬南芥植株葉室
紅藍光源     
紅藍LED光源3040-L 
調制熒光系統(tǒng)     
熒光附件3055-FL    
熒光附件3050-F    
熒光儀MINI-PAM    
熒光儀IMAGING-PAM    
 
包含 可選




WALZ 隆重推出光合儀O2傳感器






























經過WALZ工程師的不懈努力,澤泉科技為廣大用戶帶來了的GFS-3000附件——O2傳感器,通過裝配在GFS-3000上,可以通過控制條件來監(jiān)測氧氣變化環(huán)境下植物的光合熒光同步變化情況。另外該傳感器可單獨使用。


光呼吸(Photorespiration)是所有進行光合作用的細胞(該處“細胞”包括原核生物和真核生物,但并非所有這些細胞都能運行完整的光呼吸)在光照和高氧低二氧化碳情況下發(fā)生的一個生化過程。它是光合作用一個損耗能量的副反應,過程中氧氣被消耗,并且會生成二氧化碳。如果光呼吸發(fā)生在進行光合作用的生物中,那么光呼吸會抵消約30%的光合作用。因此降低光呼吸被認為是提高光合作用效能的途徑之一。

氣體交換技術測量光合速率由于自身技術原因無法排除光呼吸的干擾。為了更準確地反映光合速率,可以通過降低氧氣濃度,抑制光呼吸來實現(xiàn)。為此,我們提供了氧氣傳感器,結合控制實驗,來監(jiān)測外界進入儀器氣路的氧氣情況,以減少光呼吸對光合的影響。

單獨使用該傳感器時,具有更廣泛的應用范圍。

部分文獻




1. Zarco-Tejada PJ, Berni JAJ, Suárez L, Sepulcre-Cantó G, Morales F, Miller JR: Imaging chlorophyll fluorescence with an airborne narrow-band multispectral camera for vegetation stress detection Remote Sensing of Environment 2009, 113(6):15.
2. Tian Z-Q, Zheng B-H, Liu M-Z, Zhang Z-Y: Phragmites australis and Typha orientalis in removal of pollutant in Taihu Lake, China Journal of Environmental Sciences 2009, 21(4):440-446.
3. Su H, Li Y-G, Lan Z-J, Xu H, Liu W, Wang B-X, Biswis DK, Jiang G-M: Leaf-level plasticity of Salix gordejevii in fixed dunes compared with lowlands in Hunshandake Sandland, North China. Journal of Plant Research 2009:in press.
4. Pascual I, Azcona I, Morales F, Aguirreolea J, Sánchez-Díaz M: Growth, yield and physiology of Verticillium-inoculated pepper plants treated with ATAD and composted age sludge Plant and Soil 2009, 319(1-2):291-306.
5. Dai Y-J, Shen Z-G, Liu Y, Wang L-L, Hannaway D, Lu H-F: Effects of shade treatments on the photosynthetic capacity, chlorophyll fluorescence, and chlorophyll content of Tetrastigma hemsleyanum Diels et Gilg Environmental and Experimental Botany 2009, 65(2-3):177-182.
6. Stoll M, Schultz HR, Baecker G, Berkelmann-Loehnertz B: Early pathogen detection under different water status and the assessment of spray application in vineyards through the use of thermal imagery Precision Agriculture 2008, 9(6):407-417.
7. Ranf S, Wünnenberg P, Lee J, Becker D, Dunkel M, Hedrich R, Scheel D, Dietrich P: Loss of the vacuolar cation channel, AtTPC1, does not impair Ca2+ signals induced by abiotic and biotic stresses. The Plant Journal 2008, 53(2):287-299.
8. Kocal N, Sonnewald U, Sonnewald S: Cell wall-bound invertase limits sucrose export and is involved in symptom development and inhibition of photosynthesis during compatible interaction between tomato and Xanthomonas campestris pv. vesicatoria. 2008:in press.
9. Horst RJ, Engelsdorf T, Sonnewald U, Voll LM: Infection of maize leaves with Ustilago maydis prevents establishment of C4 photosynthesis. Journal of Plant Physiology 2008, 165(1):19-28.
10. Escher P, Peuke AD, Bannister P, Fink S, Hartung W, Jiang F, Rennenberg H: Transpiration, CO2 assimilation, WUE, and stomatal aperture in leaves of Viscum album (L.): Effect of abscisic acid (ABA) in the xylem sap of its host (Populus x euamericana) Plant Physiology and Biochemistry 2008, 46(1):64-70.
11. Dai Y-J, Shao M-M, Hannaway D, Wang L-L, Liang J-P, Hua L, Lu H-F: Effect of Thrips tabaci on anatomical features, photosynthetic characteristics and chlorophyll fluorescence of Hypericum sampsonii leaves. Crop Science 2008, 28(4):327-332.
12. BOKHORST S, BJERKE JW, BOWLES FW, MELILLO J, CALLAGHAN TV, PHOENIX GK: Impacts of extreme winter warming in the sub-Arctic: growing season responses of dwarf shrub heathland. Global Change Biology 2008, 14(11):2603-2612.
13. Bjerke JW: Ice encapsulation protects rather than disturbs the freezing lichen. Plant Biology 2008, 11(2):227-235.
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17. Xu H, Biswas DK, Li W-D, Chen S-B, Zhang L, Jiang G-M, Li Y-G: Photosynthesis and yield responses of ozone-polluted winter wheat to drought Photosynthetica 2007, 45(4):582-588.
18. Xu F, Guo W-H, Wang Y-F, Wang W, Du N, Wang R-Q: Photosynthetic fluorescence characteristics of six greening tree species on university campuses in the city of Jinan. Acta Chimica Sinica 2007, 42(5):86-94.
19. Behnke K, Ehlting B, Teuber M, Bauerfeind M, Louis S, Hansch R, Polle A, Bohlmann J, Schnitzler J-P: Transgenic, non-isoprene emitting poplars don't like it hot. Plant Journal 2007:in press.
20. Barnard RL, Salmon Y, Kodama N, Sorgel K, Holst J, Rennenberg H, Gessler A, Buchmann N: Evaporative enrichment and time lags between 18O of leaf water and organic pools in a pine stand. Plant Cell and Environment 2007, 30:539-550.

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